质量光度计—OneMP
质量光度法是一种革命性的分析生物分子的新方法。它能够在溶液中精确测量单个分子的质量，不需要任何偶联固化或者标记标签，在天然状态下，完成对生物分子的分析。这种方法为生物分析和生物分子功能研究开辟了新的可能性。
★ 无标记无修饰；
★ 保持结构完整性和活性；
★ 测量只需要几微升的样品；
★ 设计紧凑的台式仪器，无特殊安装要求；
★ 软件自动控制采集过程，并在几分钟内进行质量分析；
★ 直观地解释质量分布的结果，而不需要任何经验和知识；
★ 准确测量在溶液（而不需真空）中的蛋白分子质量；
★ 单分子分析，可靠区分样品中所有已知和未知组分，高精度捕获高丰度和低丰度分子；
★ 快速、简单、最小样本量：纳米浓度下的微升样品体积，几分钟内获得结果，宽质量范围和高动态范围；
这么优秀的分子分析技术，您还不动心么？
技术背景：
2018年，牛津大学的Philipp Kukura团队宣布他们开发的一种全新技术：质量光度法（Mass photometry），通过单分子散射光的方式测量单分子的质量。这种方法提可以精确测量溶液中单个分子的质量——处于原始状态、无需标记，提供了一种全新的分析生物分子的方法，为生物分析和研究生物分子的功能开辟了新的方法。
质量光度学建立在干涉反射显微镜和干涉散射显微镜的原理之上。牛津大学的Kukura教授团队证明了单分子在观察界面上散射的微小光量能够被可靠地检测到，可以用于计算溶液中的分子数量，更重要的是，它与分子质量直接相关，可以用于测量分子的质量。牛津大学（University of Oxford）迅速将其业务剥离出来，英国Refeyn公司的质量光度计OneMP于2019年3月上市，2020年进入中国市场，2021年，上海钰泽生物科技有限公司（www.yuze-sciences.com）获得中国大陆地区的代理权，全权负责英国Refeyn公司的质量光度计OneMP的市场推广、产品销售和售后工作。
全新的英国Refeyn公司的质量光度计OneMP，将质量光度法（Mass photometry）技术引入到日常的实验室生活中，这种独特的仪器可以让你以前所未有的灵敏度、速度、准确度和简单性来表征你感兴趣的分子，是监测蛋白质纯化、优化样品、研究蛋白质功能和相互作用的理想仪器。所有测量都可在各种各样的天然缓冲液中逐个分子地完成，还不需要标签，就可以直观地解释质量分布结果，且无需任何先验知识。
图1：质量光度法原理。附着在测量界面上的分子散射的光干扰了该界面反射的光。干涉对比度与质量成线性关系。
粒子散射的光与粒子体积和折射率成线性关系。由于蛋白质的光学性质和密度只有百分之几的变化，它们的散射信号与它们的序列质量成正比，这使得在高精度和大质量范围内用光来“称量”单个分子成为可能。许多生物分子（糖蛋白、核酸或脂类）的散射信号与质量的相关性是成立的，使得质量光度法能够成为溶液中生物分子的通用分析工具。
图2：质量光度法测量溶液中蛋白质和蛋白质组合的分子质量。通过校准，质量光度法可以高精度（平均2%）测量未知物质的质量。
质量光度法Mass photometry技术的特点：
★ 准确测量蛋白分子在溶液中的真实、天然行为；
★ 适用于在各种缓冲液中，与膜蛋白相容；
★ 无标签标记，无需修饰样品或干扰分子表面；
★ 可检测样本中所有亚群体的信息：单分子分析能够可靠地区分已知和未知样品成分，无需先验知识；
★ 单分子计数：以高精度捕获高丰度和低丰度分子；
★ 宽质量范围和高动态范围；
★ 一种分析形式可提供多个结果；
★ 保持同质性、结构完整性和活性；
★ 快速、简单、最小样本量—纳米浓度下的微升样品体积，从一滴样品中在几分钟内获得结果；
质量光度计OneMP仪器的特点：
★ 紧凑的台式仪器，安装要求低。测量只需要几微升的样品、和干净、高质量的盖玻片，几分钟内可获得结果；
★ 直观高效——Refeyn的软件自动控制采集过程，并在几分钟内完成质量分析。您可以直观地解释质量分布结果，而无需任何先验知识；
★ 前所未有的精确性——由于其高灵敏度，非常适合在生理（低）浓度下进行测量，而单分子计数技术固有的高动态范围确保低丰度分子仍能被准确捕获。质量光度法能轻松量化不同种类的蛋白质分子，具有高分辨率和重复性；
应用领域：
★ 样品纯度和成分分析 Sample characterization；
样品的纯度和稳定性是成功的生化和结构研究的关键因素。在制药生产的背景下，蛋白质的纯度是特别重要的，特别是随着蛋白质类产品如生物制剂的日益流行。
质谱光度法提供了在单个分子水平上样品异质性的快速评估，使用最小的样品体积和在几分钟内。通过质量光度法获得的质量分布提供了样品中现有物种的直接信息，由于条件变化而产生的任何变化都可以用于样品优化。
★ 异质生物分子的质量分析测量 Protein oligomerization；
许多生物系统的一个关键特征是蛋白质自组装成特定的四级结构，这往往决定和调节它们的功能。蛋白质低聚化的评估对于详细了解复杂的生物过程是至关重要的。在这种情况下，分子质量是一个重要的参数，因为它作为低聚化的直接度量。
质量光度法提供了高分辨率的分子质量分布与单分子灵敏度。这使得我们的技术能够有效地检测出占主要样本总数不到1%的稀有物种。
★ 生物分子间相互作用 Biomolecular interactions；
生物分子之间的相互作用在每个生物过程中起着关键作用。质谱光度法非常适合于定量低浓度下的相互作用，其主要优点是检测溶液中存在的生物复合物。分子质量是反映生物分子和生物分子复合物的同质性、结构完整性和活性等多种性质的通用读数。这使得质谱光度法不仅可以用于简单的纯度测定，还可以用于活性和结合性评估，提供了独特水平的数据完整性和其他类似技术的可比性。
★ 蛋白质复合物的组装与化学计量 Macromolecular assemblies；
在分子自组装中，分子或分子的一部分在没有外部因素的情况下自发形成有序结构。大分子组合包括多种蛋白质，而且通常包含其他分子，如DNA、RNA、糖和/或脂类。大分子复合物在细胞内的组装是一个高度调控的多步骤过程。质量光度计能够高效、准确地表征这些复杂的粒子，使新型超分子结构的工程具有巨大的医学研究潜力。
用户评价
质量分布是蛋白质样品相对纯度和稳定性的基本特征，可作为蛋白质纯度、复杂组装、聚集或各种缓冲液中蛋白质-蛋白质相互作用的直观读数。监测质量可以指导缓冲条件的优化，避免蛋白质聚集或促进蛋白质复合物的稳定性和组装。单分子水平上的质量测量为分子相互作用的稳态分析提供了一种直接的方法。由于其高灵敏度，质量光度计OneMP非常适合在生理（低）浓度下进行测量，而单分子计数技术固有的高动态范围确保低丰度分子仍能被准确捕获。
英国Refeyn公司首席营销官Matthias Langhorst表示，该工具的应用范围从简单的纯度检测（质量峰的数量可显示样本中有多少种蛋白质），到更复杂的分析，例如在不同条件下分析生物分子组装行为等。
在麻省理工学院研究细胞核孔复合体的Thomas Schwartz是该装置的早期测试者，他一听说质量光度测定法就联系Kukura：“这台仪器最有价值的地方在于，我们可以观察复杂的蛋白质-大分子复合物，找出混合物中的成分，是否能检测出任何与稳定性有关的问题。”“在典型的工作流程中，这是一个非常耗时的过程。”
“这些原理并不新鲜，但这种新装置的实现非常聪明和强大，因为它可以测量一个场中的每一个粒子。非常强大，具有潜在的革命性。”
发表的文献举例
MAY 2020
The linear ubiquitin chain assembly complex generates heterotypic ubiquitin chains
Carvajal A.R., Diaz C.G., Vogel A., Sonn-Segev A., et al.
bioRxiv 2020.05.27.117952; doi: https://doi.org/10.1101/2020.05.27.117952
APRIL 2020
Structural basis of host protein hijacking in human T-cell leukemia virus integration
Bhatt, V., Shi, K., Salamango, D.J. et al.
Nat Commun 11, 3121 (2020).
APRIL 2020
Characterization of CaMKIIα Holoenzyme Stability
Torres-Ocampo A P, Özden C, Hommer A, et al.
Protein Sci. 2020.
10.1002/pro.3869. doi:10.1002/pro.3869
APRIL 2020
Myosin II Filament Dynamics in Actin Networks Revealed with Interferometric Scattering Microscopy
Mosby L.S., Hundt N., Young G. et al.
Biophysical Journal, Volume 118, Issue 8, 21 April 2020, Pages 1946-1957. https://doi.org/10.1016/j.bpj.2020.02.025
MARCH 2020
Measuring the affinity of protein-protein interactions on a single-molecule level by mass photometry
Wu D, Piszczek G.
Anal Biochem. 2020.
doi:10.1016/j.ab.2020.113575
APRIL 2020
Quantifying the heterogeneity of macromolecular machines by mass photometry
Sonn-Segev A, Belacic K, Bodrug T, et al.
Nat Commun 11, 1772 (2020). https://doi.org/10.1038/s41467-020-15642-w
NOVEMBER 2019
Measurements of the self-assembly kinetics of individual viral capsids around their RNA genome
Garmann R F, Goldfain A M, Manoharan V N.
Proceedings of the National Academy of Sciences Nov 2019, 116 (45) 22485-22490; DOI: 10.1073/pnas.1909223116
JUNE 2019
Dissecting FOXP2 Oligomerization and DNA Binding
Häußermann K, Young G, Kukura P, Dietz H.
Angew Chem Int Ed Engl. 2019;58(23):7662–7667. doi:10.1002/anie.201901734
APRIL 2019
Interferometric Scattering Microscopy
Young G., Kukura P.
Annual Review of Physical Chemistry 2019 70:1, 301-322
JANUARY 2017
Label-Free Single-Molecule Imaging with Numerical-Aperture-Shaped Interferometric Scattering Microscopy
Cole D, Young G, Weigel A, et al.
ACS Photonics 2017, 4, 2, 211-216
Publication Date: January 18, 2017. https://doi.org/10.1021/acsphotonics.6b00912
FEBRUARY 2021
Discovery of a novel lactate dehydrogenase tetramerization domain using epitope mapping and peptides
Thabault L, Liberelle M, Koruza K, et al.
Journal of Biological Chemistry, 2021, 100422, ISSN 0021-9258, https://doi.org/10.1016/j.jbc.2021.100422.
FEBRUARY 2021
Rapid Characterization of AAV gene therapy vectors by Mass Photometry
Wu D, Hwang P, Li T, et al.
bioRxiv 2021.02.18.431916.
doi: https://doi.org/10.1101/2021.02.18.431916
JANUARY 2021
Single Molecule Mass Photometry Reveals Dynamic Oligomerization of Plant and Human Peroxiredoxins for Functional Conservation and Diversification
Liebthal M, Kushwah MS, Kukura P, Dietz KJ
bioRxiv 2021.01.30.428949.
DECEMBER 2020
Regenerable Biosensors for Small-Molecule Kinetic Characterization Using SPR
Gunnarsson A, Stubbs CJ, Rawlins PB, et al.
SLAS DISCOVERY: Advancing the Science of Drug Discovery. December 2020. doi:10.1177/2472555220975358
DECEMBER 2020
Mass Photometry of Membrane Proteins
Olerinyova A, Sonn Segev A, Gault J, et al.
Chem, 2020, ISSN 2451-9294.
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DECEMBER 2020
Label-free, mass-sensitive single-molecule imaging using interferometric scattering microscopy
Hundt N.
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doi: 10.1042/EBC20200023. Epub ahead of print. PMID: 33296454.
DECEMBER 2020
Hyper-truncated Asn355- and Asn391-glycans modulate the activity of neutrophil granule myeloperoxidase
Tjondro HC, Ugonotti J, Kawahara R, et al.
J Biol Chem. 2020 Dec 3:jbc.RA120.016342.
doi: 10.1074/jbc.RA120.016342. Epub ahead of print. PMID: 33273015.
NOVEMBER 2020
Polymerization of Bacillus subtilis MreB on a lipid membrane reveals lateral co-polymerization of MreB paralogs and strong effects of cations on filament formation
Dersch, S., Reimold, C., Stoll, J. et al.
BMC Mol and Cell Biol 21, 76 (2020).
AUGUST 2020
Headless C1q: a new molecular tool to decipher its collagen‐like functions
Fouët G., Bally I., Signor L., et al.
FEBS Journal, August 2020.
https://doi.org/10.1111/febs.1554
NOVEMBER 2020
Single-molecule microscopy for in-cell quantification of protein oligomeric stoichiometry
C. Huanhuan, X. Xihong, C. Tai-Yen
Current Opinion in Structural Biology,
Volume 66, 2021, Pages 112-118, ISSN 0959-440X,
https://doi.org/10.1016/j.sbi.2020.10.022.
AUGUST 2020
Rapid high-yield expression and purification of fully post-translationally modified recombinant clusterin and mutants
Satapathy, S., Dabbs, R.A. & Wilson, M.R.
Sci Rep 10, 14243 (2020).
https://doi.org/10.1038/s41598-020-70990-3
JULY 2020
Structures of fungal and plant acetohydroxyacid synthases
Lonhienne, T., Low, Y.S., Garcia, M.D. et al.
Nature (2020).
https://doi.org/10.1038/s41586-020-2514-3
JULY 2020
Substrate-induced clustering activates Trim-Away of pathogens and proteins
Zeng J., Santos A.F., Mukadam A., et. al.
bioRxiv 2020.07.28.225359.
doi: https://doi.org/10.1101/2020.07.28.225359
JULY 2020
Quantifying the monomer-dimer equilibrium of tubulin with mass photometry
Fineberg A., Surrey T., Kukura P.
J Mol Biol. 2020 Oct 14:S0022-2836(20)30590-8.
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JULY 2020
Synthesis and Characterization of Dendrimer-Based Polysarcosine Star Polymers: Well-Defined, Versatile Platforms Designed for Drug-Delivery Applications
England R.M., Moss J.I., Gunnarsson A., et al.
Biomacromolecules 2020 21 (8), 3332-3341.
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APRIL 2020
Single-Molecule Biophysical Techniques to Study Actomyosin Force Transduction
Takagi Y., Hundt N., Fineberg A.
Coluccio L. (eds) Myosins. Advances in Experimental Medicine and Biology, vol 1239. Springer, Cham.
JUNE 2020
A wealth of genotype-specific proteoforms fine-tunes hemoglobin scavenging by haptoglobin
Tamara S, Franc V, Heck A.J.R.
Proceedings of the National Academy of Sciences Jun 2020, 202002483.
doi: 10.1073/pnas.2002483117
APRIL 2020
Quantifying protein-protein interactions by molecular counting with mass photometry
Soltermann F, Foley E, Pagnoni V, et al.
Angew. Chem. Int. Ed. 2020, 59, 1–6.
https://doi.org/10.1002/anie.202001578
MARCH 2020
Single-molecule biosensors: Recent advances and applications
Akkilic N., Geschwindner S., Höök F.
Biosensors and Bioelectronics, Volume 151, 2020, 111944, ISSN 0956-5663.
https://doi.org/10.1016/j.bios.2019.111944.
FEBRUARY 2020
Single-molecule fluorescence-based approach reveals novel mechanistic insights into small heat shock protein chaperone function
Johnston C, Marzano N, Paudel B, et al.
bioRxiv 2020.02.16.951632.
doi: https://doi.org/10.1101/2020.02.16.951632
JANUARY 2020
Casposase structure and the mechanistic link between DNA transposition and spacer acquisition by CRISPR-Cas
Hickman A, Kailasan S, Genzor P, et al.
National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases, National Institutes of Health, United States
OCTOBER 2019
Membrane insertion of soluble CLIC1 into active chloride channels is triggered by specific divalent cations
Varela L, Hendry A, Medina-Carmona E, et al.
bioRxiv 638080.
MAY 2019
An ultra-stable gold-coordinated protein cage displaying reversible assembly
Malay A, Miyazaki N, Biela A, et al.
Nature 2019 569:438–442.
APRIL 2018
Quantitative mass imaging of single biological macromolecules
Young G, Hundt N, Cole D, et al.
